Бирюса м114 морозильник: Морозильник Бирюса – М114
Бирюса M114, Отдельно стоящая, 130л характеристики, цена.
- Главная
- Бытовая техника
- Техника для кухни
- Морозильные камеры
- Всё о товаре
- Отзывы
- Бытовая техника
- Техника для кухни
- Морозильные камеры
- Всё о товаре
- Характеристики
- Производитель Бирюса
- Цвет Серый
- Объем морозильной камеры 130 л
- EAN 4630000764990
Ознакомьтесь c техническими характеристиками морозильной камеры Бирюса M114, Отдельно стоящая, 130л.
Долгосрочные эффекты на микробиоту просвета и слизистой оболочки и обычно приобретаемые таксоны при трансплантации фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile
1. Kelly CP, LaMont JT. Clostridium difficile – сложнее, чем когда-либо. New Engl J Med. 2008;359(18):1932–40. doi: 10.1056/NEJMra0707500. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
2. Louie TJ, Miller MA, Mullane KM, Weiss K, Lentnek A, Golan Y, Gorbach S, Sears P, Shue YK, OPT-80-003 Группа клинических исследований Фидаксомицин по сравнению с ванкомицином при инфекции Clostridium difficile. New Engl J Med. 2011;364(5):422–31. дои: 10.1056/NEJMoa0910812. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Honda H, Dubberke ER. Изменение эпидемиологии инфекции Clostridium difficile. Курр Опин Гастроэнтерол. 2014;30(1):54–62.
doi: 10.1097/MOG.0000000000000018. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
4. Рупник М., Уилкокс М.Х., Гердинг Д.Н. Инфекция Clostridium difficile: новые разработки в эпидемиологии и патогенезе. Nat Rev Microbiol. 2009;7(7):526–36. doi: 10.1038/nrmicro2164. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
5. Surawicz CM, Brandt LJ, Binion DG, Anantakrishnan AN, Curry SR, Gilligan PH, McFarland LV, Mellow M, Zuckerbraun BS. Руководство по диагностике, лечению и профилактике инфекций Clostridium difficile. Am J Гастроэнтерол. 2013;108(4):478–98. doi: 10.1038/ajg.2013.4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
6. Mattila E, Arkkila P, Mattila PS, Tarkka E, Tissari P, Anttila VJ. Рифаксимин в лечении рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. Алимент Фармакол Тер. 2013;37(1):122–8. doi: 10.1111/apt.12111. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
7. Garey KW, Ghantoji SS, Shah DN, Habib M, Arora V, Jiang ZD, DuPont HL. Рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое пилотное исследование по оценке способности рифаксимина предотвращать рецидивирующую диарею у пациентов с инфекцией Clostridium difficile.
8. Бороды Т.Дж., Хоруц А. Трансплантация фекальной микробиоты и новые приложения. Нат Рев Гастро Гепат. 2012;9(2):88–96. doi: 10.1038/nrgastro.2011.244. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
9. Tenover FC, Tickler IA, Persing DH. Устойчивые к противомикробным препаратам штаммы Clostridium difficile из Северной Америки. Противомикробные агенты Chemother. 2012;56(6):2929–32. doi: 10.1128/AAC.00220-12. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Brandt LJ, Aroniadis OC, Mellow M, Kanatzar A, Kelly C, Park T, Stollman N, Rohlke F, Surawicz C. Долгосрочное наблюдение за колоноскопической трансплантацией фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. Am J Гастроэнтерол. 2012;107(7):1079–87. doi: 10.1038/ajg.2012.60. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11. Mattila E, Uusitalo-Seppala R, Wuorela M, Lehtola L, Nurmi H, Ristikankare M, Moilanen V, Salminen K, Seppala M, Mattila PS, et al.
Трансплантация кала посредством колоноскопии является эффективной терапией рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. Гастроэнтерология. 2012;142(3):490–6. doi: 10.1053/j.gastro.2011.11.037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. van Nood E, Vrieze A, Nieuwdorp M, Fuentes S, Zoetendal EG, de Vos WM, Visser CE, Kuijper EJ, Bartelsman JF, Tijssen JG, et al. Дуоденальное вливание донорского кала при рецидивах Clostridium difficile. N Engl J Med. 2013;368(5):407–15. doi: 10.1056/NEJMoa1205037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
13. Kassam Z, Lee CH, Yuan Y, Hunt RH. Трансплантация фекальной микробиоты при инфекции Clostridium difficile: систематический обзор и метаанализ. Am J Гастроэнтерол. 2013;108(4):500–8. doi: 10.1038/ajg.2013.59. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 14. Fuentes S, van Nood E, Tims S, Heikamp-de Jong I, ter Braak CJ, Keller JJ, Zoetendal EG, de Vos WM. Сброс критически нарушенной микробной экосистемы: фекальная трансплантация при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile.
ISME J. 2014;8(8):1621–33. doi: 10.1038/ismej.2014.13. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
15. Brace C, Gloor GB, Ropeleski M, Allen-Vercoe E, Petrof EO. Анализ микробного состава инфекций Clostridium difficile у пациента с язвенным колитом, получавшего множественные трансплантации фекальной микробиоты. Дж. Колит Крона. 2014;8(9): 1133–7. doi: 10.1016/j.crohns.2014.01.020. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Шанкар В., Гамильтон М.Дж., Хоруц А., Килбурн А., Унно Т., Палий О., Садовски М.Дж. Анализ микробиоты кишечника на уровне видов и родов у пациентов с Clostridium difficile после трансплантации фекальной микробиоты. Микробиом. 2014;2:13. дои: 10.1186/2049-2618-2-13. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
17. Вайнгарден А., Гонсалес А., Васкес-Баеза И., Вайс С., Хамфри Г., Берг-Лайонс Д., Найтс Д., Унно Т., Бобр А., Кан Дж. и др. Динамические изменения краткосрочного и долгосрочного бактериального состава после трансплантации фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile.
Микробиом. 2015;3:10. doi: 10.1186/s40168-015-0070-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
18. Lee CH, Belanger JE, Kassam Z, Smieja M, Higgins D, Brouhanski G, Kim PT. Результаты и долгосрочное наблюдение за 94 пациентами с рецидивирующей и рефрактерной инфекцией Clostridium difficile с использованием однократной или множественной трансплантации фекальной микробиоты с помощью ретенционной клизмы. Eur J Clin Microbiol. 2014;33(8):1425–8. doi: 10.1007/s10096-014-2088-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Weingarden AR, Dosa PI, DeWinter E, Steer CJ, Shaughnessy MK, Johnson JR, Khoruts A, Sadowsky MJ. Изменения в составе желчных кислот толстой кишки после трансплантации фекальной микробиоты достаточны для контроля прорастания и роста Clostridium difficile. ПЛОС Один. 2016; 11(1) doi: 10.1371/journal.pone.0147210. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
20. Buffie CG, Bucci V, Stein RR, McKenney PT, Ling L, Gobourne A, No D, Liu H, Kinnebrew M, Viale A, et al.
Точная реконструкция микробиома восстанавливает опосредованную желчными кислотами резистентность к Clostridium difficile. Природа. 2015;517(7533):205–8. doi: 10.1038/nature13828. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Satokari R, Mattila E, Kainulainen V, Arkkila PE. Простая подготовка фекалий и эффективность замороженного инокулята при трансплантации фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile — обсервационное когортное исследование. Алимент Фармакол Тер. 2015;41(1):46–53. doi: 10.1111/apt.13009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22. Lawley TD, Clare S, Walker AW, Stares MD, Connor TR, Raisen C, Goulding D, Rad R, Schreiber F, Brandt C, et al. Целенаправленное восстановление кишечной микробиоты с помощью простой, определенной бактериотерапии устраняет рецидив болезни Clostridium difficile у мышей. PLoS Патог. 2012;8(10) doi: 10.1371/journal.ppat.1002995. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23.
Petrof EO, Gloor GB, Vanner SJ, Weese SJ, Carter D, Daigneault MC, Brown EM, Schroeter K, Allen-Vercoe E. Заменитель стула трансплантационная терапия для искоренения инфекции Clostridium difficile: «повторное ПООПулирование» кишечника. Микробиом. 2013;1(1):3. дои: 10.1186/2049-2618-1-3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Kalliomaki M, Satokari R, Lahteenoja H, Vahamiko S, Gronlund J, Routi T, Salminen S. Экспрессия микробиоты, Toll-подобные рецепторы и их регуляторов в слизистой оболочке тонкой кишки при целиакии. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2012;54(6):727–32. doi: 10.1097/MPG.0b013e318241cfa8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Салонен А., Никкиля Дж., Яланка-Туовинен Дж., Иммонен О., Раджилич-Стоянович М., Кекконен Р.А., Палва А., де Вос В.М. Сравнительный анализ методов выделения фекальной ДНК с помощью филогенетического микрочипа: эффективное восстановление ДНК бактерий и архей с помощью механического лизиса клеток. J Микробиологические методы.
2010;81(2):127–34. doi: 10.1016/j.mimet.2010.02.007. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
26. Доре Дж., Эрлих С.Д., Левенес Ф., Пеллетье Э., Альберти А., Бертран Л., Борк П., Костя П.И., Сунагава С., Гарнер Ф., Маничан С., Сантьяго А., Чжао Л., Шен Дж., Чжан С., Версалович Дж., Луна Р.А., Петрозино Дж., Ян Х., Ли С., Ван Дж., Аллен-Верко Э., Глур Г., Сингх Б.; Консорциум IHMS. IHMS_SOP 06V1: Стандартная операционная процедура для выделения ДНК образцов фекалий, Протокол Q. Международные стандарты микробиома. 2015. www.microbiome-standards.org/index.php?id=253. По состоянию на 24 мая 2016 г.
27. O’Keefe SJ, Li JV, Lahti L, Ou J, Carbonero F, Mohammed K, Posma JM, Kinross J, Wahl E, Ruder E, et al. Риск жира, клетчатки и рака у афроамериканцев и сельских африканцев. Нац коммун. 2015;6:6342. doi: 10.1038/ncomms7342. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Раджилич-Стоянович М., Хейлиг Х.Г., Моленаар Д., Каяндер К., Суракка А., Смидт Х., де Вос В.
М. Разработка и применение чипа кишечного тракта человека, филогенетического микрочипа: анализ универсально консервативных филотипов в обильной микробиоте молодых и пожилых людей. Окружающая среда микробиол. 2009;11(7):1736–51. doi: 10.1111/j.1462-2920.2009.01900.x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29. Lahti L, Salojarvi J, Salonen A, Scheffer M, de Vos WM. Элементы опрокидывания в кишечной экосистеме человека. Нац коммун. 2014;5:4344. doi: 10.1038/ncomms5344. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Клаэссон М.Дж., О’Салливан О., Ван К., Никкиля Дж., Марчеси Дж.Р., Смидт Х., де Вос В.М., Росс Р.П., О’Тул П.В. Сравнительный анализ пиросеквенирования и филогенетического микрочипа для изучения структур микробного сообщества в дистальном отделе кишечника человека. ПЛОС Один. 2009; 4(8) doi: 10.1371/journal.pone.0006669. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Kainulainen V, Reunanen J, Hiippala K, Guglielmetti S, Vesterlund S, Palva A, Satokari R.
BopA не играет большой роли в адгезии Bifidobacterium bifidum к эпителиальным клеткам кишечника, белкам внеклеточного матрикса и слизи. Appl Environ Microbiol. 2013;79(22): 6989–97. doi: 10.1128/AEM.01993-13. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
32. Jalanka-Tuovinen J, Salojarvi J, Salonen A, Immonen O, Garsed K, Kelly FM, Zaitoun A, Palva A, Spiller RC, de Vos ВМ. Состав фекальной микробиоты и взаимодействие микробов-хозяев после гастроэнтерита и постинфекционного синдрома раздраженного кишечника. Кишка. 2014;63(11):1737–45. doi: 10.1136/gutjnl-2013-305994. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Qin J, Li R, Raes J, Arumugam M, Burgdorf KS, Manichanh C, Nielsen T, Pons N, Levenez F, Yamada T, et al. Каталог микробных генов кишечника человека, созданный с помощью метагеномного секвенирования. Природа. 2010;464(7285):59–65. doi: 10.1038/nature08821. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
34. Яланка-Туовинен Дж., Салонен А.
, Никкила Дж., Иммонен О., Кекконен Р., Лахти Л., Палва А., де Вос В.М. Кишечная микробиота у здоровых взрослых: временной анализ выявляет индивидуальное и общее ядро и связь с кишечными симптомами. ПЛОС Один. 2011;6(7) doi: 10.1371/journal.pone.0023035. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35. Rajilic-Stojanovic M, Heilig HG, Tims S, Zoetendal EG, de Vos WM. Длительный мониторинг состава микробиоты кишечника человека. Окружающая среда микробиол. 2013;15(4):1146–59.. doi: 10.1111/1462-2920.12023. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36. Tims S, Derom C, Jonkers DM, Vlietinck R, Saris WH, Kleerebezem M, de Vos WM, Zoetendal EG. Сохранение микробиоты и сигнатуры ИМТ у взрослых монозиготных близнецов. ISME J. 2013;7(4):707–17. doi: 10.1038/ismej.2012.146. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
37. Round JL, Mazmanian SK. Кишечная микробиота формирует кишечные иммунные реакции во время здоровья и болезни. Нат Рев Иммунол.
2009 г.;9(5):313–23. doi: 10.1038/nri2515. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Hamilton MJ, Weingarden AR, Unno T, Khoruts A, Sadowsky MJ. Анализ последовательности ДНК с высокой пропускной способностью выявляет стабильное приживление микробиоты кишечника после трансплантации предварительно замороженных фекальных бактерий. Кишечные микробы. 2013;4(2):125–35. doi: 10.4161/gmic.23571. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39. Dethlefsen L, Huse S, Sogin ML, Relman DA. Проникающие эффекты антибиотика на микробиоту кишечника человека, выявленные с помощью глубокого секвенирования 16S рРНК. PLoS биол. 2008; 6(11) doi: 10.1371/journal.pbio.0060280. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
40. Rashid MU, Zaura E, Buijs MJ, Keijser BJF, Crielaard W, Nord CE, Weintraub A. Определение долгосрочного эффекта введения антибиотиков на нормальную кишечную микробиоту человека с использованием методов культивирования и пиросеквенирования.
Клин Инфекция Дис. 2015;60:S77–84. doi: 10.1093/cid/civ137. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
41. Зотендаль Э.Г., фон Райт А., Вилппонен-Салмела Т., Бен-Амор К., Аккерманс А.Д., де Вос В.М. Ассоциированные со слизистой оболочкой бактерии в желудочно-кишечном тракте человека равномерно распределены по толстой кишке и отличаются от сообщества, выделенного из фекалий. Appl Environ Microbiol. 2002;68(7):3401–7. doi: 10.1128/AEM.68.7.3401-3407.2002. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
42. Сатокари Р., Фуэнтес С., Маттила Э., Джаланка Дж., Де Вос В.М., Арккила П. Лечение трансплантацией кала антибиотикоиндуцированного неинфекционного колита и долгосрочное наблюдение за микробиотой. Кейс Rep Med. 2014;2014:913867. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
43. Reunanen J, Kainulainen V, Huuskonen L, Ottman N, Belzer C, Huhtinen H, de Vos WM, Satokari R. Akkermansia muciniphila прилипает к энтероцитам и укрепляет целостность слоя эпителиальных клеток.
Appl Environ Microbiol. 2015;81(11):3655–62. doi: 10.1128/AEM.04050-14. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44. Джонсон Дж.Л., Джонс М.Б., Кобб Б.А. Полисахарид А из капсулы Bacteroides fragilis индуцирует клональную экспансию CD4+ Т-клеток. Дж. Биол. Хим. 2015;290(8):5007–14. doi: 10.1074/jbc.M114.621771. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Ван И, Телесфорд К.М., Очоа-Репараз Дж., Хак-Бегум С., Кристи М., Каспер Э.Дж., Ван Л., Ву И., Робсон С.К., Каспер Д.Л. и соавт. Фактор кишечного комменсального симбиоза контролирует нейровоспаление посредством TLR2-опосредованной передачи сигналов CD39. Нац коммун. 2014;5:4432. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
46. Li SS, Zhu A, Benes V, Costea PI, Hercog R, Hildebrand F, Huerta-Cepas J, Nieuwdorp M, Salojarvi J, Voigt AY, et al. Длительное сосуществование штаммов донора и реципиента после трансплантации фекальной микробиоты. Наука. 2016;352(6285):586–9.
doi: 10.1126/science.aad8852. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Cheng J, Ringel-Kulka T, Heikamp-de Jong I, Ringel Y, Carroll I, de Vos WM, Salojarvi J, Satokari R. Дискордантное временное развитие бактериальных типов и появление ядра в фекальной микробиоте детей раннего возраста. ISME J. 2016;10(4):1002–14. doi: 10.1038/ismej.2015.177. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
48. Chu H, Khosravi A, Kusumawardhani IP, Kwon AH, Vasconcelos AC, Cunha LD, Mayer AE, Shen Y, Wu WL, Kambal A, et al. Взаимодействия генов и микробиоты способствуют патогенезу воспалительного заболевания кишечника. Наука. 2016;352(6289):1116–20. doi: 10.1126/science.aad9948. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Wrzosek L, Miquel S, Noordine ML, Bouet S, Chevalier-Curt MJ, Robert V, Philippe C, Bridonneau C, Cherbuy C, Robbe- Масселот С. и др. Bacteroides thetaiotaomicron и Faecalibacterium prausnitzii влияют на выработку гликанов слизи и развитие бокаловидных клеток в эпителии толстой кишки гнотобиотической модели грызунов.
БМС Биол. 2013;11:61. doi: 10.1186/1741-7007-11-61. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
50. Луис П., Холд Г.Л., Флинт Х.Дж. Микробиота кишечника, бактериальные метаболиты и колоректальный рак. Nat Rev Microbiol. 2014;12(10):661–72. doi: 10.1038/nrmicro3344. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
51. Duncan SH, Louis P, Flint HJ. Бактерии, утилизирующие лактат, выделенные из фекалий человека и производящие бутират в качестве основного продукта ферментации. Appl Environ Microbiol. 2004;70(10):5810–7. doi: 10.1128/AEM.70.10.5810-5817.2004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
52. Ватанабе Ю., Нагаи Ф., Моротоми М. Характеристика Phascolarctobacterium succinatutens sp nov., асахаролитической, утилизирующей сукцинат бактерии, выделенной из фекалий человека. Appl Environ Microbiol. 2012;78(2):511–8. doi: 10.1128/AEM.06035-11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
53. Lopez CA, Kingsbury DD, Velazquez EM, Baumler AJ.